Tudóstér: Hegedűs Éva publikációi

Képes, Z., Hegedűs, É., Sass, T., Csíkos, C., Péli-Szabó, J., Szugyiczki, V., Hajdu, I., Kertész, I., Opposits, G., Imrek, J., Balkay, L., Kálmán, F., Trencsényi, G.: Concomitant [18F]F-FAZA and [18F]F-FDG Imaging of Gynecological Cancer Xenografts: insight Into Tumor Hypoxia.
In Vivo. 38 (2), 574-586, 2024.

Képes, Z., Arató, V., Csíkos, C., Hegedűs, É., Esze, R., Nagy, T., Jószai, I., Emri, M., Kertész, I., Trencsényi, G.: In Vivo Evaluation of Brain [18F]F-FDG Uptake Pattern Under Different Anaesthesia Protocols.
In Vivo. 38 (2), 587-597, 2024.

Rehó, B., Fadel, L., Brázda, P., Benziane, A., Hegedűs, É., Sen, P., Gadella, T., Tóth, K., Nagy, L., Vámosi, G.: Agonist-controlled competition of RAR and VDR nuclear receptors for heterodimerization with RXR is manifested in their DNA-binding.
J. Biol. Chem. 299 (2), 1-16, 2023.

Gyöngy, Z., Mocsár, G., Hegedűs, É., Stockner, T., Ritter, Z., Homolya, L., Schamberger, A., Orbán, T., Gálné Remenyik, J., Szakács, G., Goda, K.: Nucleotide binding is the critical regulator of ABCG2 conformational transitions.
eLife. 12 1-24, 2023.

Fadel, L., Rehó, B., Volkó, J., Bojcsuk, D., Kolostyák, Z., Nagy, G., Müller, G., Simándi, Z., Hegedűs, É., Szabó, G., Tóth, K., Nagy, L., Vámosi, G.: Agonist binding directs dynamic competition among nuclear receptors for heterodimerization with retinoid X receptor.
J. Biol. Chem. 295 (29), 10045-10061, 2020.

Hegedűs, É., Kókai, E., Nánási, P., Imre, L., Halász, L., Jossé, R., Antunovics, Z., Webb, M., El Hage, A., Pommier, Y., Székvölgyi, L., Dombrádi, V., Szabó, G.: Endogenous single-strand DNA breaks at RNA polymerase II promoters in Saccharomyces cerevisiae.
Nucleic Acids Res. 46 (20), 10649-10668, 2018.

Imre, L., Simándi, Z., Horváth, A., Fenyőfalvi, G., Nánási, P., Firouzi Niaki, E., Hegedűs, É., Bacsó, Z., Weyemi, U., Mauser, R., Ausio, J., Jeltsch, A., Bonner, W., Nagy, L., Kimura, H., Szabó, G.: Nucleosome stability measured in situ by automated quantitative imaging.
Sci Rep. 7 (1), 1-15, 2017.

Székvölgyi, L., Imre, L., Doan-Xuan, Q., Hegedűs, É., Bacsó, Z., Szabó, G.: Flow Cytometric and Laser Scanning Microscopic Approaches in Epigenetics Research.
Methods Mol. Biol. 567 99-111, 2009.

Hegedűs, É., Kókai, E., Vereb, G., Bacsó, Z., Székvölgyi, L., Dombrádi, V., Szabó, G.: Mapping the arrangement of nicks marking loop-size domains in yeast chromatin.
Cell. Oncol. 31 (2), 143-144, 2009.

Hegedűs, É., Kókai, E., Kotlyar, A., Dombrádi, V., Szabó, G.: Separation of 1-23-kb complementary DNA strands by urea-agarose gel electrophoresis.
Nucleic Acids Res. 37 (17), e112, 2009.

Hegedűs, É., Imre, L., Pataki, J., Lizanecz, E., Székvölgyi, L., Fazakas, F., Bacsó, Z., Tóth, A., Szabó, M., Seres, Z., Szabó, G.: Heteroduplex analysis using flow cytometric microbead assays to detect deletions, insertions, and single-strand lesions.
Cytometry A. 73 (3), 238-245, 2008.

Székvölgyi, L., Hegedűs, É., Molnár, M., Bacsó, Z., Szarka, K., Beck, Z., Dombrádi, V., Austin, C., Szabó, G.: Nick-forming sequences may be involved in the organization of eukaryotic chromatin into ~50 kbp loops.
Histochem. Cell Biol. 125 (1-2), 63-73, 2006.

Pataki, J., Szabó, M., Lantos, E., Székvölgyi, L., Molnár, M., Hegedűs, É., Bacsó, Z., Kappelmayer, J., Lustyik, G., Szabó, G.: Biological microbeads for flow-cytometric immunoassays, enzyme titrations, and quantitative PCR.
Cytometry A. 68 (1), 45-52, 2005.

Szilágyi, I., Varga, T., Székvölgyi, L., Hegedűs, É., Goda, K., Kaczur, V., Bacsó, Z., Nakayama, Y., Pósafi, J., Pongor, S., Szabó, G.: Non-random features of loop-size chromatin fragmentation.
J. Cell. Biochem. 89 (6), 1193-1205, 2003.